當(dāng)前位置： 首頁(yè) - 產(chǎn)品目錄 - 生化試劑盒
1,5二磷酸核酮糖羧化酶(Rubisco)檢測(cè)試劑盒（分光光度法50T/48S）
| 貨號(hào) | SH0518 | 售價(jià)（元） | 4560 |
| 規(guī)格 | 50T/48S | CAS號(hào) |
- 產(chǎn)品簡(jiǎn)介
- 相關(guān)產(chǎn)品
|
貨號(hào) |
名稱(chēng) |
規(guī)格 |
|
SH0518 |
1,5二磷酸核酮糖羧化酶(Rubisco)檢測(cè)試劑盒（分光光度法50T/48S） |
50T/48S |
|
SH0519 |
1,5二磷酸核酮糖羧化酶(Rubisco)檢測(cè)試劑盒（分光光度法25T/24S） |
25T/24S |
測(cè)定意義：
二磷酸核酮糖羧化酶（EC 4.1.1.39）是植物光合作用中的一個(gè)關(guān)鍵酶，既控制著CO2的固定，同時(shí)又制約著碳素向Calvin循環(huán)和光呼吸循環(huán)分流，其活性的大小直接影響著光合速率。
測(cè)定原理：
（1）在Rubisco的催化下，1分子的核酮糖-1，5-二磷酸（RuBP）與1分子的CO2結(jié)合，產(chǎn)生2分子的3-磷酸甘油酸（PGA）；（2）PGA可通過(guò)外加的3-磷酸甘油酸激酶和甘油醛-3-磷酸脫氫酶的作用，產(chǎn)生甘油醛-3-磷酸，伴隨著NADH氧化生成NAD+；（3）在340 nm NADH有特征吸收峰，而NAD+沒(méi)有此吸收峰，因此測(cè)定340nm吸光度下降速率可以代表Rubisco的羧化酶活性。
組成：
|
產(chǎn)品名稱(chēng) |
SH0519-25T/24S |
SH0518-50T/48S |
Storage |
|
提取液一：液體 |
25ml |
50ml |
4℃ |
|
提取液二：液體 |
25ml |
50ml |
4℃ |
|
試劑一：液體 |
30ml |
60ml |
4℃ |
|
試劑二：粉劑 |
1瓶 |
1瓶 |
-20℃ |
|
試劑三：粉劑 |
1瓶 |
1瓶 |
-20℃ |
|
試劑四：粉劑 |
1瓶 |
1瓶 |
-20℃ |
|
說(shuō)明書(shū) |
一份 |
||
SH0519-25T/24S試劑二：粉劑×1瓶，-20℃保存；臨用前加入12.5ml試劑一，充分混勻待用；用不完的SH0519-25T/24S試劑分裝后-20℃保存，禁止反復(fù)凍融；
SH0519-25T/24S試劑三：粉劑×1瓶，-20℃保存；臨用前加入12.5ml試劑一，充分混勻待用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復(fù)凍融；
SH0519-25T/24S試劑四：粉劑×1瓶，-20℃保存；臨用前加入1.25 ml試劑一，充分溶解待用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復(fù)凍融；
SH0518-50T/48S試劑二：粉劑×1瓶，-20℃保存；臨用前加入25ml試劑一，充分混勻待用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復(fù)凍融；
SH0518-50T/48S試劑三：粉劑×1瓶，-20℃保存；臨用前加入25ml試劑一，充分混勻待用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復(fù)凍融；
SH0518-50T/48S試劑四：粉劑×1瓶，-20℃保存；臨用前加入2.5 ml試劑一，充分溶解待用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復(fù)凍融；
（注意：試劑二、三、四溶解后，按需分裝-20℃保存。）
自備儀器和用品：
可見(jiàn)-紫外分光光度計(jì)、臺(tái)式離心機(jī)、水浴鍋、可調(diào)式移液器、1ml石英比色皿、研缽、冰和蒸餾水。
粗酶液制備：
①總Rubisco酶提?。?/span>建議稱(chēng)取約0.1g樣本，加入1ml提取液一，冰浴勻漿后超聲破碎（冰浴，200W，破碎3s，間歇7s，總時(shí)間1min），然后4℃，8000g離心10min，取上清測(cè)定。
②胞漿和葉綠體Rubisco酶的分離：按照植物組織質(zhì)量（g）：提取液體積(ml)為1：5～10的比例（建議稱(chēng)取約0.1g樣本，加入1ml提取液一），冰浴勻漿后于4℃，200g離心5min，棄沉淀，取上清在4℃，8000g離心10min，取上清用于測(cè)定胞漿Rubisco酶活性，取沉淀加1ml提取液二，震蕩溶解后超聲破碎（冰浴，200W，破碎3s，間歇7s，總時(shí)間1min），然后4℃，8000g離心10min，取上清測(cè)定葉綠體中Rubisco酶活性。
建議測(cè)定總Rubisco酶活性，按照步驟①提取粗酶液，若需要分別測(cè)定胞漿和葉綠體中的Rubisco，則按步驟②提取粗酶液。
（照注意：粗酶液制備過(guò)程中超聲破碎操作使用細(xì)胞破碎儀進(jìn)行。）
測(cè)定步驟：
1、 分光光度計(jì)預(yù)熱30min以上，調(diào)節(jié)波長(zhǎng)至340nm，蒸餾水調(diào)零。
2、 樣本測(cè)定
（1） 工作液的配制：臨用前將試劑二和試劑三1：1混合，用多少配多少；
（2） 在1ml石英比色皿中加入50ul樣本、50ul試劑四和900ul工作液，混勻，立即記錄340nm處20s時(shí)吸光值A1和5min20s時(shí)的吸光值A2，計(jì)算ΔA=A1-A2。
Rubisco活性計(jì)算：
1、按樣本蛋白濃度計(jì)算
單位的定義：25℃中1 mg蛋白1 min氧化1 n mol NADH。
Rubisco（nmol/min /mg prot）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(V樣×Cpr) ÷T =643×ΔA÷Cpr
此法需要測(cè)定粗酶液中蛋白質(zhì)濃度，建議選購(gòu)本公司生產(chǎn)的BCA蛋白質(zhì)濃度測(cè)定試劑盒。
2、按樣本鮮重計(jì)算
單位的定義：25℃中1 g組織1 min氧化1 nmol NADH。
Rubisco（nmol/min/g 鮮重）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(V樣÷V樣總×W) ÷T=643×ΔA÷W
上述計(jì)算公式中各符合含義：
V反總：反應(yīng)體系總體積，1×10-3 L；ε：NADH摩爾消光系數(shù)，6.22×103 L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm；V樣：加入樣本體積，0.05 ml；V樣總：加入提取液體積，1ml；T：反應(yīng)時(shí)間，5 min；W：樣本質(zhì)量，g。